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项目介绍透射电镜，即透射电子显微镜（Transmission Electron Microscope，简称 TEM），是一种最高分辨率可达到0.1-0.2纳米的显微镜，是观察和研究超微结构的重要工具。在生物科学研究方面，透射电镜可用来观察细胞整体结构、细胞亚细胞结构，包括（植物）细胞壁、细胞膜、细胞核和各种细胞器的变化、外源物质（如病原微生物、各种纳米颗粒）与细胞的关系，如外源物质进入细胞内部的方式、在细胞内的分布情况、细胞对外界刺激的反应（包括自噬、凋亡、坏死等）。
1. 主要用于生物样品（细胞，生物组织）材料内部形貌的分析和研究；
2. 对样品进行包埋，超薄切片，染色等工序，制成TEM样品；
3. 通过透射电镜观察样品内部的组织形貌。
送样方式：
可接收固定好的细胞/组织样品并附有详细送检要求的送样单
①需要您提供的样品：收集细胞/组织取样（新鲜迅速取材），置于1.5ml离心管内，加入2.5%的戊二醛溶液（固定液加满离心管，使样品完全浸没在固定液中），放置于4℃保存，请不要倒弃固定液，一般固定12h后可寄送（务必采用1.5ml离心管寄送）。
②打印填写完整的预约单、送样单和样品一起寄送。
样品取材及固定常用方法：
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细胞类 |
106以上的细胞，用细胞刮刀刮下来，1500-3000转离心，5-10min，收集细胞于1.5ml或2ml离心管，管底肉眼可见2-3粒大米状样品，如果细胞量很多，把细胞团块用细针尖挑成几个小团块，弃上清，沿管壁缓慢加入4℃预冷的固定液，固定液完全浸没样品，可放置于4°C保存。 |
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组织类 |
新鲜取材，取材位置准确，组织大小尽量在1-2mm³，离体取材后请尽快投入4℃预冷的固定液中，固定液完全浸没组织，可放置于4°C保存。 |
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细菌类 |
吸取OD0.5-0.8的培养物，离心后弃培养基，收集菌体沉淀于管底黄豆大小，可以用PBS洗1-2次，齐上清，沿管壁缓慢加入4℃预冷的固定液，固定液完全浸没样品，可放置于4°C保存。 |
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*固定液的量请参考上图，加至箭头所示位置 |
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结果展示
常见问题-
扫描电镜制样流程？
新鲜取材后用2.5%戊二醛固定液固定样本，4℃过夜放置，倒掉2.5%戊二醛固定液，用0.1M，pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次，每次15min；用1%的锇酸溶液固定样品1-2h；小心取出锇酸废液，用0.1M，pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次，每次15min；用梯度浓度（包括30%，50%，70%，80%，90%和95%五种浓度）的乙醇溶液对样品进行脱水处理，每种浓度处理15min，再用100%的乙醇处理两次，每次20 min。用乙醇与醋酸异戊酯的混合液（V/V=1/1）处理样品30min，再用纯醋酸异戊酯处理样品1h或放置过夜。临界点干燥/冷冻干燥处理。镀膜，观察。处理好的样品在扫描电镜中观察。
